Μονάδα Βιοαπεικόνισης

Banner

Η Μονάδα Οπτικής Μικροσκοπίας (MOM) του Ελληνικού Ινστιτούτου Παστέρ (ΕΙΠ) είναι μία από τις πιο σύγχρονες και άρτια εξοπλισμένες απεικονιστικές μονάδες Μικροσκοπίας στην Ελλάδα. Η ΜΟΜ είναι μέλος της Ευρωπαϊκής Πρωτοβουλίας Οπτικής Μικροσκοπίας (European Light Microscopy Initiative, ELMI) και του BioImaging.GR consortium. Η ΜΟΜ αποτελεί μια πλατφόρμα ανοιχτής πρόσβασης, που στοχεύει να παρέχει προηγμένες υπηρεσίες και «εργαλεία» Οπτικής Μικροσκοπίας και ανάλυσης εικόνας στους επιστήμονες του ΕΙΠ καθώς και σε επιστήμονες από εθνικά και διεθνή ερευνητικά ιδρύματα και Πανεπιστήμια.
Η ΜΟΜ έχει αναπτύξει συνεργασίες με κορυφαίες ομάδες απεικόνισης στην ΕΕ και με το Institut Pasteur Paris (Image Analysis hub platform, Biological Image Analysis Unit- Icy), οι οποίες έχουν συμβάλει στην ανάπτυξη καινοτόμων τεχνολογιών απεικόνισης και ανάλυσης εικόνας στη ΜΟΜ. Επιπλέον, ευρωπαϊκές και εθνικές επιχορηγήσεις όπως BIOIMAGING-GR – Υποτροφία Υπουργείου Παιδείας για Υποδομές (2017-2020), Χορήγηση Ιδρύματος Σταύρος Νιάρχος: (2016-2020), KRHPIS I-II (2015-2018) και το Πρόγραμμα FP7 ΕΕ NEUROSIGN (2010-2013) έχουν υποστηρίξει τη σημαντική αναβάθμιση της ΜΟΜ. Η ΜΟΜ είναι ο κόμβος της Intravital Imaging 2 φωτονίων στο Bioimaging-GR Consortium, καθώς και της γρήγορης απεικόνισης ζωντανών κυττάρων.

Οι κύριες μεθοδολογίες αιχμής που εφαρμόζονται στη ΜΟΜ είναι:
•    intravital  απεικόνιση 2 φωτονίων στον φλοιό του εγκεφάλου διαγονιδιακών ποντικών,
•    απεικόνιση ζωντανών κυττάρων βραχείας και μεγάλης διάρκειας και
•    ανάλυση εικόνας με χρήση εμπορικά διαθέσιμου και/ή ανοιχτής πρόσβασης λογισμικού ανάλυσης εικόνας.

Η ΜΟΜ έχει αναδειχθεί μέσω του Διεθνούς Δικτύου Ινστιτούτου Παστέρ ως κόμβος για προηγμένη εκπαίδευση απεικόνισης και επιστημονικές συνεργασίες. Επιπλέον, η ΜΟΜ έχει διοργανώσει εκπαιδευτικές δραστηριότητες, ενώ δημοσιεύσεις με συμμετοχή ή αναγνώριση της ΜΟΜ έχουν δημοσιευθεί σε διεθνή περιοδικά.

Στρατηγικός στόχος μας είναι να αναπτύξουμε τα κατάλληλα εργαλεία και την τεχνολογία που θα μας επιτρέψουν να παρακολουθούμε σε πραγματικό χρόνο την εξέλιξη της νόσου σε ένα ευρύ φάσμα μοντέλων μεταδοτικών και μη μεταδοτικών ασθενειών, να αναπτύξουμε απεικόνιση ιόντων ασβεστίου σε ζωντανά κύτταρα, καθώς και πολύ-παραμετρική απεικόνιση middle-throughput και high-throughput.

Η μονάδα είναι εξοπλισμένη με δύο Συνεστιακά Μικροσκόπια, το ένα εκ των οποίων λειτουργεί και ως πολυφωτονικό και ένα μικροσκόπιο ευρέως πεδίου «Time lapse» με δυνατότητα βιντεοσκόπισης ζωντανών κυττάρων. Τα μικροσκόπια χρησιμοποιούνται ευρέως από τους επιστήμονες του ΕΙΠ για μελέτες στους τομείς της Μικροβιολογίας, Ανοσολογίας, Κυτταρικής Βιολογίας και Νευροβιολογίας, που επιτρέπουν την ανίχνευση του συνεντοπισμού μορίων σε κυτταρικό και υποκυτταρικό επίπεδο και απεικόνιση ζωντανών κυττάρων, ιστών και ολόκληρων πειραματοζώων σε 4D και 5D. Ειδικά το σύστημα πολυφωτονικής μικροσκοπίας επιτρέπει απεικόνιση δυναμικών κυτταρικών αλληλεπιδράσεων που συμβαίνουν σε μεγάλο βάθος μέσα στους ιστούς των πειραματοζώων. Ο εξοπλισμός της Μονάδας Οπτικής Μικροσκοπίας είναι διαθέσιμος για χρήση από εξωτερικούς χρήστες από άλλα ερευνητικά ιδρύματα και πανεπιστήμια.

Οι εφαρμογές μικροσκοπίας που πραγματοποιούνται στη Μονάδα είναι:

  • Πολυχρωματική τρισδιάστατη απεικόνιση (3D imaging)
  • Απεικόνιση ζωντανών κυττάρων μακράς διάρκειας  (long time in vivo time-lapse experiments)
  • Πολυφωτονική μικροσκοπία (2-photon microscopy)
  • Απεικόνιση νευρικού συστήματος ζωντανών πειραματοζώων (Intravital imaging)
  • Δεύτερη αρμονική απεικόνιση (second harmonic imaging)
  • Μελέτες συνεντοπισμού μορίων σε κύτταρα/ιστούς
  • Παρακολούθηση σωματιδίων (particle tracking)
  • Απεικόνιση ιόντων ασβεστίου (Calcium imaging)
  • Μικροσκοπία αντίθεσης φάσης (Phase contrast)
  • Μικροσκοπία αντίθεσης διαφορικής συμβολής (DIC-Nomarski)
  • Μέθοδοι ανάλυσης και ποσοτικοποίησης ψηφιακής εικόνας με τα προγράμματα ανάλυσης εικόνας ImageJ/Fiji, αυτοματοποιημένες αναλύσεις με macro, Imaris και Icy.

Για τους χρήστες του ΕΙΠ:

Το πρόγραμμα για τη χρήση των μικροσκοπίων ξεκινά το μεσημέρι της Τετάρτης κάθε εβδομάδας και ισχύει για την επόμενη εβδομάδα. Ο μέγιστος χρόνος χρήσης του κάθε μικροσκοπίου ανά εβδομάδα είναι 4 ώρες/ χρήστη, για μέγιστο αριθμό δύο δίωρων sessions την εβδομάδα.

Για εξωτερικούς χρήστες:

Δέσμευση του μικροσκοπίου γίνεται με τηλεφωνική επικοινωνία με την τεχνικό της Mονάδας, με συμβολική χρέωση ανά ώρα χρήσης.

Εκπαίδευση χρηστών:

Κάθε νέος χρήστης των συστημάτων μικροσκοπίας καθώς και των λογισμικών για ανάλυση εικόνας πρέπει:

  • Να ενημερωθεί για τους κανόνες κράτησης και τις βασικές αρχές χρήσης των συστημάτων, καθώς και τις δυνατότητες που παρέχουν για τις συγκεκριμένες εφαρμογές που τον ενδιαφέρουν.
  • Nα εκπαιδευτεί από την υπεύθυνη τεχνικό της Μονάδας στη χρήση του συστήματος που τον ενδιαφέρει και κατά τις τρεις πρώτες φορές που θα χρησιμοποιήσει το συγκεκριμένο σύστημα και μέχρι να εξοικειωθεί με τη χρήση του να πραγματοποιεί τις συνεδρίες με τη βοήθεια/ παρουσία της υπεύθυνης τεχνικού
  • Οι νέοι χρήστες της Μονάδας Μικροσκοπίας καθώς και οι παλαιότεροι χρήστες που ξεκινούν ένα νέο project πρέπει να υποβάλλουν μία περίληψη του project στη Μονάδα Μικροσκοπίας.

Δημοσιεύσεις:

Στις ερευνητικές εργασίες που δημοσιεύονται και περιλαμβάνουν αποτελέσματα με τη χρήση των μικροσκοπίων ή/και προγραμμάτων ανάλυσης εικόνων της Μονάδας Οπτικής Μικροσκοπίας του ΕΙΠ, πρέπει να αναγνωρίζεται στα acknowledgments  η βοήθεια και η υποστήριξη από τη Μονάδα Οπτικής Μικροσκοπίας. Αντίγραφο της δημοσίευσης σε PDF θα πρέπει να αποστέλλεται στη Μονάδα Μικροσκοπίας.

ImageJ/Fiji macro workshop (6-10/05/2019)

Το σεμινάριο διάρκειας  5 ημερών διοργανώθηκε στο Ελληνικό Ινστιτούτο Παστέρ στην Αθήνα, σε συνεργασία με την πλατφόρμα Image Analysis hub του Ινστιτούτου Παστέρ Παρισίων. Στόχος του σεμιναρίου ήταν να παρέχει θεωρητική και πρακτική εκπαίδευση σε μεθόδους ανάλυσης εικόνας και αυτοματοποίησης χρησιμοποιώντας τη γλώσσα προγραμματισμού macro και το πρόγραμμα ανοιχτού κώδικα Fiji.

 

Το πρόγραμμα του σεμιναρίου περιλάμβανε ομιλίες και πρακτική εκπαίδευση στις βασικές γνώσεις του ImageJ/Fiji, ανίχνευση αντικειμένων (segmentation), machine learning με τη χρήση της εφαρμογής WEKA του Fiji και του προγράμματος Ilastik, ανάλυση της παρακολούθησης σωματιδίων με την εφαρμογή Trackmate του Fiji, γλώσσα προγραμματισμού ImageJ Macrο, μαζική επεξεργασία εικόνων με τη χρήση macros και προηγμένος προγραμματισμός σε γλώσσα macrο, ενώ η τελευταία ημέρα του σεμιναρίου ήταν αφιερωμένη στην ανάλυση εικόνων των εκπαιδευομένων και στην εφαρμογή των νέων γνώσεων που απέκτησαν.

Οι εκπαιδευτές ήταν οι Dmitry Ershov και Sébastien Herbert από την  πλατφόρμα Image Analysis hub του Ινστιτούτου Παστέρ Παρισίων. Οι εκπαιδευόμενοι ήταν 5 επιστήμονες από το Ελληνικό Ινστιτούτο Παστέρ (4 εκ των οποίων μέλη της Μονάδας Οπτικής Μικροσκοπίας και του προγράμματος Bioimaging.gr) και 3 εξωτερικοί επιστήμονες από το Πανεπιστήμιο και άλλα ερευνητικά κέντρα στην Αθήνα. 

Με την υποστήριξη:

Του προγράμματος BIOIMAGING-GR «Ελληνική Ερευνητική Υποδομή για την Aπεικόνιση και Παρακολούθηση Θεμελιωδών Διεργασιών στη Βιολογία και την Ιατρική» και του Ελληνικού Ινστιτούτου Παστέρ.

8

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

«REVEALING LIFE’S HIDDEN SECRETS THROUGH NEW TECHNOLOGY» Leica workshop (5-6/06/2018)

 

Το σεμινάριο διάρκειας  2 ημερών διοργανώθηκε στο Ελληνικό Ινστιτούτο Παστέρ στην Αθήνα, με την υποστήριξη της Leica Microsystems, του προγράμματος Bioimaging-GR και του Ελληνικού Ινστιτούτου Παστέρ. Στόχος του σεμιναρίου ήταν να παρέχει θεωρητική και πρακτική εκπαίδευση σε προηγμένες εφαρμογές της μικροσκοπίας σε επιστήμες ζωής με έμφαση στη μικροσκοπία 2 φωτονίων και στη συνεστιακή μικροσκοπία φθορισμού μέσω:

  1. Διαλέξεων από εκπαιδευτές της Leica Microsystems και Έλληνες ερευνητές
  2. Πρακτικής εκπαίδευσης στη χρήση συνεστιακών μικροσκοπίων
  3. Συζητήσεων με τους ειδικούς στο ευρύτερο πεδίο της μικροσκοπίας

35 εκπαιδευόμενοι ακολούθησαν το θεωρητικό και το πρακτικό μέρος, ενώ ένας αριθμός συμμετεχόντων παρακολούθησε μόνο το θεωρητικό μέρος του σεμιναρίου.

9

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

RIIP International course “Cell biology and Infection: Digital Image processing/Analysis tools for quantitative light microscopy imaging” (4-8/07/2016)

Το σεμινάριο διάρκειας 5 ημερών διοργανώθηκε στο Ελληνικό Ινστιτούτο Παστέρ στην Αθήνα το διάστημα 4-8 Ιουλίου 2016, με στόχο την παροχή θεωρητικής και πρακτικής εκπαίδευσης σε μεθόδους ανάλυσης ψηφιακής εικόνας και εξαγωγής αποτελεσμάτων., Το πρόγραμμα του σεμιναρίου περιλάμβανε:

 

• Διαλέξεις εστιασμένες στις μεθόδους και νέους αλγόριθμους/προγράμματα για την Επεξεργασία/Ανάλυση Ψηφιακών δεδομένων με Μικροσκοπία Φωτός (εικόνες και βίντεο) και επιλεγμένα θέματα Κυτταρικής Βιολογίας και Βιολογίας του παθογόνου ξενιστή αλληλεπίδρασης.

• Πρακτικές συνεδρίες υπολογιστή σχετικά με την ποσοτική ανάλυση των συνόλων δεδομένων εικόνων μικροσκοπίας με χρήση του λογισμικού ανοιχτού κώδικα Icy και ImageJ/Fiji

• Άτυπες συζητήσεις και σεμινάρια με ειδικούς στον τομέα

 

European FP7 Regpot-2010 ‘Neurosign’ theoretical and practical workshop “Live Cell Imaging and Electrophysiology” (1-4/10/2013)

Το σεμινάριο διεξήχθη το διάστημα 1-4 Οκτωβρίου 2013 στο Ελληνικό Ινστιτούτο Παστέρ στην Αθήνα. Στόχος του σεμιναρίου ήταν να παράσχει στους μεταπτυχιακούς και μεταδιδακτορικούς επιστήμονες εννοιολογική και πρακτική κατανόηση της απεικόνισης ζωντανών κυττάρων του Κεντρικού Νευρικού Συστήματος σε επίπεδο ολόκληρου ζωντανού πειραματόζωου (whole animal imaging), καθώς και της ηλεκτροφυσιολογίας.

Κατά τη διάρκεια των πρακτικών ασκήσεων, οι 20 επιλεγμένοι συμμετέχοντες είχαν την ευκαιρία να παρακολουθήσουν τα εξής πειράματα:

  • χειρουργική επέμβαση σε ποντίκια για τη δημιουργία και εγκατάσταση κρανιακού «παραθύρου» και «παραθύρου» στον νωτιαίο μυελό,
  • intravital Multiphoton απεικόνιση
  • πειράματα ηλεκτροφυσιολογίας με καταγραφές σημάτων από μεμονωμένα κύτταρα θηλαστικών, χρησιμοποιώντας την τεχνική patch-clamp.

Η χρηματοδότηση χορηγήθηκε από το FP7 REGPOT 2010-1 EC Πρόγραμμα «NeuroSign» που στοχεύει στην ίδρυση Κέντρου Αριστείας για τη μελέτη της Νευροσήμανσης κατά τη λειτουργία και τη δυσλειτουργία του νευρικού συστήματος στο Ελληνικό Ινστιτούτο Παστέρ.

 

RIIP Regional Course Digital image processing/ analysis tools in Light Microscopy: From the basics and beyond” (10-17/6/ 2013)

Το 8ήμερο σεμινάριο διοργανώθηκε στο Ελληνικό Ινστιτούτο Παστέρ στην Αθήνα, το διάστημα 10-17 Ιουνίου 2013. Στόχος του σεμιναρίου ήταν η παροχή θεωρητικής και πρακτικής εκπαίδευσης σε μεθόδους ανάλυσης ψηφιακής εικόνας και στη χρήση λογισμικών ανοιχτού κώδικα και εμπορικών για την ποσοτική αξιολόγηση δεδομένων μικροσκοπίας φθορισμού μέσω:

  • Διαλέξεων
  • Hands –on πρακτικών εκπαιδευτικών συνεδριών με δεδομένα μικροσκοπίας των συμμετεχόντων ή δεδομένα που παρέχονται από τους εκπαιδευτές.
  • Άτυπων συζητήσεων και σεμιναρίων με ειδικούς στον τομέα.
  • Πρακτικών συνεδριών στα ακόλουθα λογισμικά ανάλυσης εικόνας: Imaris, Scientific Volume Imaging (SVI), Image J/Fiji, Icy bioimage analysis, Cell profiler και Timm’s Tracking Tool.

 10

 

   

PUBLICATIONS 2018-2023 from projects carried out in HPI-LMU

Year

 

Senescent cells in Giant Cell Arteritis display inflammatory phenotype participating in tissue injury via IL-6 dependent pathways.

Veroutis D, Argyropoulou OD, Goules AV, Kambas K, Palamidas DA, Evangelou K, Havaki S, Polyzou A, Xingi E, Karatza E, Boki K, Cavazza A, Kittas C, Thanos D, Ricordi C, Marvisi C, Muratore F, Galli E, Croci S, Salvarani C, Gorgoulis VG, Tzioufas AG

Annals of the Rheumatic Diseases 2023 Nov 24:ard-2023-224467.

PMID: 38050005

2023

 

LPS-Induced Systemic Inflammation Affects the Dynamic Interactions of Astrocytes and Microglia with the Vasculature of the Mouse Brain Cortex. Xingi E, Koutsoudaki P, Thanou I, Phan M.S, Margariti M, Scheller A, Tinevez J-Y, Kirchhoff F, Thomaidou D. Cells (2023) May 17;12(10):1418.

PMID: 37408252

2023

 

A miR-124-mediated post-transcriptional mechanism controlling the cell fate switch of astrocytes to induced neurons. Elsa Papadimitriou Paraskevi N KoutsoudakiIrini Thanou Dimitra Karagkouni Timokratis KaramitrosDafni Chroni-TzartouMaria GaitanouChristos GkemisisMaria MargaritiEvangelia XingiSocrates J TzartosArtemis G HatzigeorgiouDimitra Thomaidou

Stem Cell Reports 2023 Mar 13;S2213-6711(23)00056-5.

PMID: 36963393

2023

 

Down-regulation of KLF2 in lung fibroblasts is linked with COVID-19 immunofibrosis and restored by combined inhibition of NETs, JAK-1/2 and IL-6 signalingAkrivi ChrysanthopoulouChristina Antoniadou Anastasia-Maria NatsiEfstratios Gavriilidis Vasileios PapadopoulosEvangelia XingiStylianos DidaskalouDimitrios Mikroulis Victoria TsironidouKonstantinos Kambas Maria KoffaPanagiotis SkendrosKonstantinos Ritis

 Clin Immunol 2023 Feb;247:109240.

PMID: 36693535

2023

 

Human monoclonal natural IgG antibodies can penetrate MDA-MB-231 cells and transport intracellularly paclitaxel-loaded gold nanorods. Theodora Stivarou, Ligeri Papaioannou, Ioannis Sarrigeorgiou, Konstantinos Avgoustakis, Peggy Lymberi. Journal of Drug Delivery Science and Technology Vol. 80, February 2023, 104109

https://doi.org/10.1016/j.jddst.2022.104109

2023

 

New Affordable Methods for Large-Scale Isolation of Major Olive Secoiridoids and Systematic Comparative Study of Their Antiproliferative/Cytotoxic Effect on Multiple Cancer Cell Lines of Different Cancer Origins. Aikaterini PapakonstantinouPetrina Koumarianou Aimilia RigakouPanagiotis DiamantakosEfseveia FrakolakiNiki VassilakiEvangelia ChavdoulaEleni MelliouProkopios MagiatisHaralabia Boleti

Int J Mol Sci 2022 Dec 20;24(1):3.

PMID: 36613449

2022

 

Neutrophil extracellular traps in giant cell arteritis biopsies: presentation, localization and co-expression with inflammatory cytokines. Dimitris Anastasios PalamidasOurania D ArgyropoulouNatalia Georgantzoglou Elli KaratzaEvangelia XingiEfstathia K KapsogeorgouConstantinos D Anagnostopoulos Andreas C Lazaris Konstantinos Ritis .

Rheumatology (Oxford) 2022 Apr 11;61(4):1639-1644.

PMID: 34260696

2022

 

Exploiting the Role of Hypoxia-Inducible Factor 1 and Pseudohypoxia in the Myelodysplastic Syndrome Pathophysiology
Ioanna E. Stergiou, Konstantinos Kambas, Aikaterini Poulaki, Stavroula Giannouli, Theodora Katsila, Aglaia Dimitrakopoulou, Veroniki Vidali , Vasileios Mouchtouris , Ismini Kloukina, Evangelia Xingi, Stamatis N. Pagakis, Lesley Probert , George P. Patrinos, Konstantinos Ritis, Athanasios G. Tzioufas and Michael Voulgarelis. Ιnt. J. Mol. Sci. 2021, 22, 4099.

PMID: 33921064

 

2021

 

The Leishmania donovani LDBPK_220120.1 Gene Encodes for an Atypical Dual Specificity Lipid- Like Phosphatase Expressed in Promastigotes and Amastigotes;
Substrate Specificity, Intracellular Localizations, and Putative Role(s)
. Amalia Papadaki, Olympia Tziouvara, Anastasia Kotopouli, Petrina Koumarianou,
Anargyros Doukas, Pablo Rios, Isabelle Tardieux, Maja Köhn and Haralabia Boleti.
Front Cell Infect Microbiol 2021 Mar 25;11:591868. doi: 10.3389/fcimb.2021.591868. PMID: 33842381

2021

 

Novel cell-based analysis reveals region-dependent changes in microglial dynamics in grey matter in a cuprizone model of demyelination.  Ilias Roufagalas, Maria Avloniti, Alexandra Fortosi, Evangelia Xingi, Dimitra Thomaidou, Lesley Probert, Vasiliki Kyrargyri. Neurobiology of Disease, 2021 Sep;157:105449. doi: 10.1016/j.nbd.2021.105449. PMID: 34274460

2021

 

Total Phenolic Fraction (TPF) from Extra Virgin Olive Oil: Induction of apoptotic-like cell death in Leishmania spp. promastigotes and in vivo potential of therapeutic immunomodulation. Kalliopi Karampetsou, Olga S. Koutsonι, Georgia Gogou, Apostolis Angelis, Leandros-Alexios Skaltsounis, Eleni Dotsika. PLoS Negl Trop Dis 15(1) 2021: e0008968. PMID: 33428610

2021

 

High Content Screening and Proteomic Analysis Identify a Kinase Inhibitor that rescues pathological phenotypes in a Patient-Derived Model of Parkinson's Disease. Nasia Antoniou, Kanella Prodromidou, Georgia Kouroupi, Martina Samiotaki, George Panayotou, Maria Xilouri, Leonidas Stefanis, Regis Grailhe, Era Taoufik, Rebecca Matsas. Bioarchives 2021, doi: https://doi.org/10.1101/2020.06.12.148031

2021

 

Increased autophagy/mitophagy levels in primary tumours of patients with pancreatic neuroendocrine neoplasms.  

Daskalakis K, Alexandraki KI, Kloukina I, Kassi E, Felekouras E, Xingi E, Pagakis SN, Tsolakis AV, Andreakos E, Kaltsas G, Kambas K. Endocrine 2020 May;68(2):438-447. doi: 10.1007/s12020-020-02228-1. PMID: 32114655

2020

 

Leishmania dual-specificity tyrosine-regulated kinase 1 (DYRK1) is required for sustaining Leishmania  stationary phase phenotype

Vinícius Pinto Costa RochaMariko DacherSimon Alan YoungFoteini KolokousiAntonia EfstathiouGerald Frank SpäthMilena Botelho Pereira SoaresDespina Smirlis. Mol Microbiol. 2020 May;113(5):983-1002. doi: 10.1111/mmi.14464. PMID: 31975452

2020

 

Combining RANK/RANKL and ERBB-2 targeting as a novel strategy in ERBB-2-positive breast carcinomas. Zoi I, Karamouzis MV, Xingi E, Sarantis P, Thomaidou D, Lembessis P, Theocharis S, Papavassiliou AG. Breast Cancer Res. 2019 Dec 3;21(1):132. doi: 10.1186/s13058-019-1226-9. PMID: 31796128

2019

 

Estrogen receptor beta increases sensitivity to enzalutamide in androgen receptor-positive triple-negative breast cancer. Anestis A, Sarantis P, Theocharis S, Zoi I, Tryfonopoulos D, Korogiannos A, Koumarianou A, Xingi E, Thomaidou D, Kontos M, Papavassiliou AG, Karamouzis MV. J Cancer Res Clin Oncol. 2019 May;145(5):1221-1233. doi: 10.1007/s00432-019-02872-9. Epub 2019 Feb 25. PMID: 30805773

2019

 

Heterologous expression of the mammalian sodium-nucleobase transporter SNBT1 in Leishmania tarentolae. Doukas A, Karena E, Botou M, Papakostas K, Papadaki A, Tziouvara O, Xingi E, Frillingos S, Boleti H. (2019). Biochim Biophys Acta Biomembr.1861(9):1546-1557. doi:10.1016/j.bbamem.2019.07.001.  Epub 2019 Jul 5. PMID: 31283918

2019

 

CHUK/IKKalpha loss in lung epithelial cells enhances NSCLC growth associated with HIF up-regulation. Chavdoula E., Habiel D.M., Roupakia E., Markopoulos G.S., Vasilaki E., Kokkalis A., Polyzos A.P, Boleti H., Thanos D., Klinakis A., Kolettas E.,  Marcu K.B. (2019).  Life Science Aliance, 2(6). http://doi.org/10.26508/lsa.201900460

2019

 

Emerging Role of l-Dopa Decarboxylase in Flaviviridae Virus Infections. Frakolaki E, Kalliampakou KI, Kaimou P, Moraiti M, Kolaitis N, Boleti H, Koskinas J, Vassilacopoulou D, Vassilaki N. (2019). Cells 8(8). pii: E837. doi: 10.3390/cells8080837.PMID: 31387309

2019

 

Increased Anxiety-Related Behavior, Impaired Cognitive Function and Cellular Alterations in the Brain of Cend1-deficient Mice.

Segklia K, Stamatakis A, Stylianopoulou F, Lavdas AA, Matsas R. Front Cell Neurosci. 2019 Jan 29;12:497.

doi: 10.3389/fncel.2018.00497. PMID: 30760981

2019

 

In Vivo Phenotyping of Familial Parkinson’s Disease with Human  Induced Pluripotent Stem Cells: A Proof-of-Concept Study
Ourania Zygogianni, Nasia Antoniou, Maria Kalomoiri, Georgia Kouroupi, Era Taoufik, Rebecca Matsas
Vol.:(0123456789)Neurochemical Research (2019) 44:1475–1493

https://doi.org/10.1007/s11064-019-02781-w. PMID: 30989481

 

2019

 

Systemic activation of NLRP3 inflammasome in patients with severe primary Sjögren’s syndrome fueled by inflammagenic DNA accumulations.  (2018). Vakrakou AG, Boiu S, Ziakas PD, Xingi E, Boleti H, Manoussakis MN. J Autoimmun. Jul; 91:23-33. PMID: 29551295

 

2018

   
 

 

Οι Επιστήμονες που υποστηρίζουν την ΜΟΜ του ΕΙΠ έχουν συμμετάσχει είτε ως μέλη είτε ως επιστημονικοί υπεύθυνοι σε αρκετές αιτήσεις επιχορήγησης που κατάφεραν να προσελκύσουν χρηματοδότηση για τη ΜΟΜ είτε για την οργάνωση επιμορφωτικών σεμιναριακών μαθημάτων είτε για την αναβάθμιση του εξοπλισμού και την ανάπτυξη νέας μεθοδολογίας από τις ακόλουθες επιχορηγήσεις:

 

International Network of Pasteur Institutes (IPIN) PTR Grant (2020-2022): “Microglia Imaging in Alzhemer’s Disease”. Scientific Responsibles:  Dr. D. Thomaidou, Dr. M. Costa (Institut Pasteur Lille), Dr. J-Y. Tinevez, Institut Pasteur Paris.
ΒΙΟΙΜAGING GR 2018-2020: “Hellenic Research Infrastructure for the Imaging and Observation of Fundamental Processes in Biology and Medicine” (MIS 5002755) which is implemented under the Action “Reinforcement of the Research and Innovation Infrastructure”, funded by the Operational Programme “Competitiveness, Entrepreneurship and Innovation” (NSRF 2014-2020) and co-financed by Greece and the European Union (European Regional Development Fund, coordinator Dr. Tavernarakis, IMBB Forth).
Stavros Niarchos Foundations Sponsorships 2016-2020: «Development of innovative Biological products and health services for infectious and neurodegenerative diseases» (Coordinators Drs. R. Matsa and V. Myriagou)
Ηellenic State Scholarship Foundation (Ι.Κ.Υ.) and German Burau for Academics’ Exchanges (DAAD): IKYDA program 2014-2015: Astroglia activation and reprogramming in brain injury and repair: analysis by in vivo imaging (2P-LSM) of the brain (Scientific Responsible Dr. D. Thomaidou).
RIIP (Institut Pasteur International Network) International course 2016 :
” Cell Biology and infection: Digital Image Processing/Analysis Tools for Quantitative Light Microscopy Imaging”. Scientific Responsible Dr. H. Boleti
FP7 EU program 264083 NEUROSIGN 2010-2013: Development of Centre of Excellence in Neurosciences (cordinators. Dr.S. Tzartos– Dr. R. Matsa & Dr. L. Probert (Dr. D. Thomaidou Responsible for WP of purchasing the Infrastructure equipment for in vivo imaging).
RIIP (Institut Pasteur International Network) Regional course 2013:
“Digital image processing/analysis tools in Light Microscopy: From the basics and beyond”. Scientific Responsible Dr. H. Boleti
Competitive grant from the Greek General Secretariat of Research and Technology in the context οφ European program “Human Networks for training in Research and Technology” 2004-2006 –Establishment of the Greek Light Microscopy Network Title: “Applications of Light Microscopy in Biomedical research and Diagnosis” In colaboration with the U. of Ioannina & U. of Crete Coordinator of the project and of the Network, HPI-LMU. (Scientific Responsible ¨Drs H. Boleti & D. Thomaidou).

Μέλη
Παλαιότερα Μέλη
ΚΥΤΤΑΡΟΜΕΤΡΙΑ ΡΟΗΣ
Οι εγκαταστάσεις της Κυτταρομετρίας Ροής (FACS) FACS του ΕΙΠ υποστηρίζονται από μια ερευνήτρια και μια τεχνικό που παρέχουν επιστημονικές συμβουλές και τεχνική βοήθεια στους χρήστες. Τα όργανα της εγκατάστασης FACS χρησιμοποιούνται από ερευνητές του Ινστιτούτου για πολλαπλές μελέτες, όπως ο διαχωρισμός κυτταρικών πληθυσμών και η ανίχνευση αρκετών παραμέτρων με φθορισμό καθώς και μορφολογικά χαρακτηριστικά των κυττάρων με πρόσθια και πλευρική σκέδαση (FSC & SSC) για μελέτη των χαρακτηριστικών κυττάρων του ανοσοποιητικού συστήματος καθώς και άλλων κυτταρικών πληθυσμών, την ανίχνευση απόπτωσης, τον κυτταρικό θάνατο, την ανάλυση κυτταρικού κύκλου, την κυτταρική διαίρεση κλπ.